1樓：匿名使用者
情況是這樣，一般而言，培養基都是呈現出澄清透明的狀態，這樣分光光度計在600或者660nm的時候，通過率基本上是100%。
隨著微生物生長的進行，微生物利用培養基中的營養物質，菌體不斷增加，培養基的狀態由澄清變為渾濁，實驗證明，培養基的濁度與微生物的生長量呈線性正比關係，這樣就可以利用分光光度計的度數來反應微生物的生長。
在實際操作過程中，比較簡便的方法，就是利用滅菌後的培養基作為參比液，在600或者660nm下進行od值的測定，反映微生物生長量，如果在工廠或者僅僅將od值作為反映微生物生長狀態的引數的話，這樣就夠了；如果你是在研究室或者要發一些高質量英文**的話，建議你將od值轉為菌體乾重，這樣就更加準確了，轉為菌體乾重的過程，只需要在做微生物生長曲線的過程中，不僅僅要測定od值，還要將菌懸液進行離心，用生理鹽水進行洗滌，再離心等步驟，然後將菌體乾燥，測定菌體乾重，這樣就可以得到od值與菌體乾重的對應關係。
2樓：zoro的鬼徹
測量發酵液的od600 然後做一條cdw（菌體乾重）-od600的標準曲線 每次用標曲換算就可以得到微生物生長量
用紫外分光光度計測培養液中微生物的生物量，od值會大於1嗎？還有測定波長一定要設定為600nm嗎？
3樓：匿名使用者
菌濃度高的話會出現這種情況！出現這種情況為能使測量值更加精確可以增加培養液的稀釋倍數。
測定波長不一定就是600nm，具體要看微生物的種類，比如我們測枯草芽孢桿菌的菌濃度就是用620nm波長
4樓：匿名使用者
可以有不同od，比如660.
od值會大於1的，可以到達4，6.問題是分光光度計靈敏度有範圍，高了就不準了。所以，一般超過0.8就要做稀釋來測定。你查一下資料，看看你們的分光光度計靈敏度範圍。
分光光度計如何測量樣品??????急急急急急急
5樓：匿名使用者
分光光度計要測量的樣品必須是均一的溶液，不能有沉澱，如果有沉澱的話就要搖勻。之於為什麼這樣做和可以做哪些測量、如何測量，下面詳述:
分光光度計就是利用分光光度法對物質進行定量定性分析的儀器。
而分光光度法則是通過測定被測物質在特定波長處或一定波長範圍內光的吸收度，對該物質進行定性和定量分析。 常用的波長範圍為：(1)200～400nm的紫外光區,(2)400～760nm的可見光區,(3)2.
5～25μm（按波數計為4000cm<-1>～400cm<-1>）的紅外光區。所用儀器為紫外分光光度計、可見光分光光度計（或比色計）、紅外分光光度計或原子吸收分光光度計。為保證測量的精密度和準確度，所有儀器應按照國家計量檢定規程或本附錄規定，定期進行校正檢定。
單色光輻射穿過被測物質溶液時，被該物質吸收的量與該物質的濃度和液層的厚度（光路長度）成正比，其關係如下式： 1 a=log — =ecl t 式中 a 為吸收度； t 為透光率； e 為吸收係數，採用的表示方法是(e1％ 1cm),即吸收度換算成溶液濃度為1％(g/ml)，液層厚度為1cm的數值； c 為100ml溶液中所含被測物質的重量，g(按乾燥品或無水物計算）； l 為液層厚度 ，cm。 物質對光的選擇性吸收波長，以及相應的吸收係數是該物質的物理常數。
當已知某純物質在一定條件下的吸收係數後,可用同樣條件將該供試品配成溶液，測定其吸收度,即可由上式計算出供試品中該物質的含量。在可見光區，除某些物質對光有吸收外，很多物質本身並沒有吸收,但可在一定條件下加入顯色試劑或經過處理使其顯色後再測定,故又稱比色分析。由於顯色時影響呈色深淺的因素較多，且常使用單色光純度較差的儀器，故測定時應用標準品或對照品同時操作。
分光光度計已經成為現代分子生物實驗室常規儀器。常用於核酸，蛋白定量以及細菌生長濃度的定量。
分光光度計的簡單原理
分光光度計計採用一個可以產生多個波長的光源，通過系列分光裝置，從而產生特定波長的光源，光源透過測試的樣品後，部分光源被吸收，計算樣品的吸光值，從而轉化成樣品的濃度。樣品的吸光值與樣品的濃度成正比。
核酸的定量
核酸的定量是分光光度計使用頻率最高的功能。可以定量溶於緩衝液的寡核苷酸，單鏈、雙鏈dna，以及rna。核酸的最高吸收峰的吸收波長260 nm。
每種核酸的分子構成不一，因此其換算係數不同。定量不同型別的核酸，事先要選擇對應的係數。如：
1od 的吸光值分別相當於50μg/ml的dsdna，37μg/ml的ssdna，40μg/ml的rna，30μg/ml的olig。測試後的吸光值經過上述係數的換算，從而得出相應的樣品濃度。測試前，選擇正確的程式，輸入原液和稀釋液的體積，爾後測試空白液和樣品液。
然而，實驗並非一帆風順。讀數不穩定可能是實驗者最頭痛的問題。靈敏度越高的儀器，表現出的吸光值漂移越大。
事實上，分光光度計的設計原理和工作原理，允許吸光值在一定範圍內變化，即儀器有一定的準確度和精確度。如eppendorf biophotometer的準確度≤1.0%（1a）。
這樣多次測試的結果在均值1.0%左右之間變動，都是正常的。另外，還需考慮核酸本身物化性質和溶解核酸的緩衝液的ph值，離子濃度等：
在測試時，離子濃度太高，也會導致讀數漂移，因此建議使用ph值一定、離子濃度較低的緩衝液，如te，可大大穩定讀數。樣品的稀釋濃度同樣是不可忽視的因素：由於樣品中不可避免存在一些細小的顆粒，尤其是核酸樣品。
這些小顆粒的存在干擾測試效果。為了最大程度減少顆粒對測試結果的影響，要求核酸吸光值至少大於0.1a，吸光值最好在0.
1-1.5a。在此範圍內，顆粒的干擾相對較小，結果穩定。
從而意味著樣品的濃度不能過低，或者過高（超過光度計的測試範圍）。最後是操作因素，如混合要充分，否則吸光值太低，甚至出現負值；混合液不能存在氣泡，空白液無懸浮物，否則讀數漂移劇烈；必須使用相同的比色杯測試空白液和樣品，否則濃度差異太大；換算係數和樣品濃度單位選擇一致；不能採用視窗磨損的比色杯；樣品的體積必須達到比色杯要求的最小體積等多個操作事項。
除了核酸濃度，分光光度計同時顯示幾個非常重要的比值表示樣品的純度，如a260/a280的比值，用於評估樣品的純度，因為蛋白的吸收峰是280nm。純淨的樣品，比值大於1.8（dna）或者2.
0（rna）。如果比值低於1.8 或者2.
0，表示存在蛋白質或者酚類物質的影響。a230表示樣品中存在一些汙染物，如碳水化合物，多肽，苯酚等，較純淨的核酸a260/a230的比值大於2.0。
a320檢測溶液的混濁度和其他干擾因子。純樣品，a320一般是0。
蛋白質的直接定量（uv法）
這種方法是在280nm波長，直接測試蛋白。選擇warburg 公式，光度計可以直接顯示出樣品的濃度，或者是選擇相應的換算方法，將吸光值轉換為樣品濃度。蛋白質測定過程非常簡單，先測試空白液，然後直接測試蛋白質。
由於緩衝液中存在一些雜質，一般要消除320nm 的「背景」資訊，設定此功能「開」。與測試核酸類似，要求a280的吸光值至少大於0.1a，最佳的線性範圍在1.
0-1.5 之間。實驗中選擇warburg 公式顯示樣品濃度時，發現讀數「漂移」。
這是一個正常的現象。事實上，只要觀察a280的吸光值的變化範圍不超過1%，表明結果非常穩定。漂移的原因是因為warburg 公式吸光值換算成濃度，乘以一定的係數，只要吸光值有少許改變，濃度就會被放大，從而顯得結果很不穩定。
蛋白質直接定量方法，適合測試較純淨、成分相對單一的蛋白質。紫外直接定量法相對於比色法來說，速度快，操作簡單；但是容易受到平行物質的干擾，如dna的干擾；另外敏感度低，要求蛋白的濃度較高。
比色法蛋白質定量
蛋白質通常是多種蛋白質的化合物，比色法測定的基礎是蛋白質構成成分：氨基酸（如酪氨酸，絲氨酸）與外加的顯色基團或者染料反應，產生有色物質。有色物質的濃度與蛋白質反應的氨基酸數目直接相關，從而反應蛋白質濃度。
比色方法一般有bca，bradford，lowry 等幾種方法。
lowry 法：以最早期的biuret 反應為基礎，並有所改進。蛋白質與cu2 反應，產生藍色的反應物。
但是與biuret 相比，lowry 法敏感性更高。缺點是需要順序加入幾種不同的反應試劑；反應需要的時間較長；容易受到非蛋白物質的影響；含edta，triton x-100，ammonia sulfate 等物質的蛋白不適合此種方法。
bca（bicinchoninine acid assay）法：這是一種較新的、更敏感的蛋白測試法。要分析的蛋白在鹼性溶液裡與cu2 反應產生cu ，後者與bca形成螯合物，形成紫色化合物，吸收峰在562nm波長。
此化合物與蛋白濃度的線性關係極強，反應後形成的化合物非常穩定。相對於lowry法，操作簡單，敏感度高。但是與lowry法相似的是容易受到蛋白質之間以及去汙劑的干擾。
bradford 法：這種方法的原理是蛋白質與考馬斯亮蘭結合反應，產生的有色化合物吸收峰595nm。其最大的特點是，敏感度好，是lowry 和bca 兩種測試方法的2 倍；操作更簡單，速度更快；只需要一種反應試劑；化合物可以穩定1小時，方便結果；而且與一系列干擾lowry，bca 反應的還原劑（如dtt，巰基乙醇）相容。
但是對於去汙劑依然是敏感的。最主要的缺點是不同的標準品會導致同一樣品的結果差異較大，無可比性。
某些初次接觸比色法測定的研究者可能為各種比色法測出的結果並不一致，感到迷惑，究竟該相信哪種方法？由於各種方法反應的基團以及顯色基團不一，所以同時使用幾種方法對同一樣品得出的樣品濃度無可比性。例如：
keller等測試人奶中的蛋白，結果lowry，bca 測出的濃度明顯高於bradford，差異顯著。即使是測定同一樣品，同一種比色法選擇的標準樣品不一致，測試後的濃度也不一致。如用lowry測試細胞勻漿中的蛋白質，以bsa作標準品，濃度1.
34mg/ml，以a球蛋白作標準品，濃度2.64mg/ml。因此，在選擇比色法之前，最好是參照要測試的樣本的化學構成，尋找化學構成類似的標準蛋白作標準品。
另外，比色法定量蛋白質，經常出現的問題是樣品的吸光值太低，導致測出的樣品濃度與實際的濃度差距較大。關鍵問題是，反應後1011分光光度計的重要配件—— 比色杯的顏色是有一定的半衰期，所以每種比色法都列出了反應測試時間，所有的樣品（包括標準樣品），都必須在此時間內測試。時間過長，得到的吸光值變小，換算的濃度值降低。
除此，反應溫度、溶液ph值等都是影響實驗的重要原因。此外，非常重要的是，最好是用塑料的比色法。避免使用石英或者玻璃材質的比色杯，因為反應後的顏色會讓石英或者玻璃著色，導致樣品吸光值不準確。
細菌細胞密度（od 600）
實驗室確定細菌生長密度和生長期，多根據經驗和目測推斷細菌的生長密度。在遇到要求較高的實驗，需要採用分光光度計準確測定細菌細胞密度。od600是追蹤液體培養物中微生物生長的標準方法。
以未加菌液的培養液作為空白液，之後定量培養後的含菌培養液。為了保證正確操作，必須針對每種微生物和每臺儀器用顯微鏡進行細胞計數，做出校正曲線。實驗中偶爾會出現菌液的od值出現負值，原因是採用了顯色的培養基，即細菌培養一段時間後，與培養基反應，發生變色反應。
另外，需要注意的是，測試的樣品不能離心，保持細菌懸浮狀態。
分光光度計的重要配件—— 比色杯
比色杯按照材質大致分為石英杯、玻璃杯以及塑料杯。根據不同的測量體積，有比色杯和毛細比色杯等。一般測試核酸和紫外定量蛋白，均採用石英杯或者玻璃杯，但是不適合比色法測定。
因為反應中的染料（如考馬斯亮蘭）能讓石英和玻璃著色，所以必須採用一次性的塑料杯。而塑料杯一般不適合用於在紫外範圍內測試樣品。
由於另外測試的樣品量不同，所以一般分光光度計廠家提供不同容積的比色杯以滿足使用者不同的需求。目前市場已經存在一種既可用於核酸、紫外蛋白質定量，亦可用於蛋白比色法測定的塑料杯，樣品用量僅需50μl，比色杯單個無菌包裝，可以**樣品。如eppendorf uvette®塑料比色杯，是目前比色杯市場上一個革新。
隨著生命科學以及相關學科發展，對此類科學的實驗研究提出更高的要求，分光光度計將是分子生物學實驗室不可缺少的儀器，也成為微生物、食品、製藥等相關實驗室的必備裝置之一。
隨著科技的發展，現在比色杯已經不是使用分光光度計時的必備物品。目前國外nanodrop公司（現已被thermo fisher公司收購）生產的nd1000分光光度計與舊式分光光度計相比，已經可以做到無需稀釋樣品，無需使用比色杯，每次測量僅需1-2μl樣品即可完成測量。
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